摘要

口蹄疫病毒 VP2 蛋白作為重要結(jié)構(gòu)抗原，其原核表達(dá)產(chǎn)物的抗原性分析對(duì)新型疫苗研發(fā)至關(guān)重要。研究采用威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀構(gòu)建高效表達(dá)體系，通過優(yōu)化大腸桿菌 BL21 (DE3) 轉(zhuǎn)化條件，實(shí)現(xiàn) VP2 蛋白的可溶性表達(dá)。經(jīng) ELISA 與 Western blot 驗(yàn)證，表達(dá)產(chǎn)物與口蹄疫病毒抗體特異性結(jié)合活性達(dá)天然蛋白的 89%，為低成本疫苗原料生產(chǎn)提供技術(shù)支撐。

引言

口蹄疫（Foot-and-Mouth Disease, FMD）是危害畜牧業(yè)的烈性傳染病，其病原體口蹄疫病毒（FMDV）的結(jié)構(gòu)蛋白 VP2 參與病毒衣殼組裝，是誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生中和抗體的關(guān)鍵抗原表位載體。原核表達(dá)系統(tǒng)因操作簡(jiǎn)便、成本低廉，成為規(guī)模化生產(chǎn) VP2 抗原蛋白的平臺(tái)。然而，VP2 蛋白富含 β- 折疊結(jié)構(gòu)，在大腸桿菌中易形成包涵體，且傳統(tǒng)轉(zhuǎn)化方法存在效率低、細(xì)胞損傷嚴(yán)重等問題，導(dǎo)致可溶性蛋白產(chǎn)量不足、抗原構(gòu)象易損，制約了其在疫苗開發(fā)中的應(yīng)用。

電穿孔技術(shù)通過脈沖電場(chǎng)瞬時(shí)改變細(xì)胞膜通透性，是原核細(xì)胞外源基因遞送的核心手段。威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀突破傳統(tǒng)設(shè)備局限，采用高精度指數(shù)波脈沖技術(shù)與實(shí)時(shí)電弧監(jiān)測(cè)系統(tǒng)，在保證細(xì)胞高存活率的同時(shí)顯著提升轉(zhuǎn)化效率。其極簡(jiǎn)操作界面僅需設(shè)置電壓參數(shù)即可一鍵觸發(fā)，配合獨(dú)立電轉(zhuǎn)座設(shè)計(jì)，可靈活適配原核細(xì)胞、真核細(xì)胞及微生物等多種樣本類型，為口蹄疫 VP2 蛋白的高效表達(dá)與抗原性保持提供了創(chuàng)新性解決方案。

一、 材料與方法

1. 實(shí)驗(yàn)材料

宿主菌株：大腸桿菌 BL21 (DE3)（實(shí)驗(yàn)室保藏，經(jīng) 16S rRNA 測(cè)序確認(rèn)遺傳背景）目標(biāo)基因：口蹄疫病毒 O 型毒株 VP2 編碼序列（通過 RT-PCR 從病毒 RNA 中擴(kuò)增，經(jīng)某試劑公司序列驗(yàn)證）表達(dá)載體：pET-32a (+) 質(zhì)粒（含氨芐青霉素抗性基因，實(shí)驗(yàn)室保存）試劑：LB 培養(yǎng)基（某試劑，按標(biāo)準(zhǔn)配方配制）、氨芐青霉素（某試劑，終濃度 100μg/mL）、IPTG（某試劑，誘導(dǎo)濃度 0.5mM）、電轉(zhuǎn)緩沖液（10% 甘油溶液，0.22μm 濾膜除菌）、蛋白純化試劑盒（某品牌，含 Ni-NTA 親和層析樹脂）、口蹄疫病毒特異性多克隆抗體（實(shí)驗(yàn)室自制，經(jīng) ELISA 驗(yàn)證效價(jià)≥1:10000）

2. 主要儀器

威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀（配備 0.1cm 電轉(zhuǎn)杯，適配原核細(xì)胞轉(zhuǎn)化，獨(dú)立電轉(zhuǎn)座支持快速更換實(shí)驗(yàn)體系）高速冷凍離心機(jī)（某品牌，轉(zhuǎn)速精度 ±50rpm，溫控范圍 4-40℃）恒溫?fù)u床（某品牌，轉(zhuǎn)速范圍 20-300rpm，溫度控制精度 ±0.1℃）熒光定量 PCR 儀（某品牌，用于重組質(zhì)粒拷貝數(shù)檢測(cè)）SDS-PAGE 電泳系統(tǒng)（某品牌，支持 8-16% 濃度梯度膠制備）酶標(biāo)儀（某品牌，檢測(cè)波長(zhǎng)范圍 200-800nm，用于 ELISA 分析）

二、 原核表達(dá)體系構(gòu)建

1. 重組質(zhì)粒構(gòu)建

將 VP2 編碼序列經(jīng) NdeI 和 XhoI 雙酶切后，與同樣酶切處理的 pET-32a (+) 載體連接，轉(zhuǎn)化至大腸桿菌 DH5α 感受態(tài)細(xì)胞。挑取單菌落于含氨芐青霉素的 LB 培養(yǎng)基中 37℃振蕩培養(yǎng) 12h，提取質(zhì)粒并進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳與測(cè)序驗(yàn)證，獲得正確重組質(zhì)粒 pET-32a-VP2。

2. 感受態(tài)細(xì)胞制備

從 - 80℃凍存管中取 50μL 大腸桿菌 BL21 (DE3) 接種于 5mL LB 培養(yǎng)基，37℃振蕩培養(yǎng)至 OD???=0.6。菌液冰浴 30min 后，4℃、5000rpm 離心 10min 收集菌體，用預(yù)冷的電轉(zhuǎn)緩沖液洗滌 3 次，最終重懸于 10% 甘油溶液中，調(diào)整細(xì)胞濃度至 5×10? CFU/mL，分裝成 50μL / 管，冰上保存或液氮速凍后 - 80℃凍存。

3. 電穿孔轉(zhuǎn)化優(yōu)化

取 5μL 重組質(zhì)粒（濃度 1μg/μL）與 50μL 感受態(tài)細(xì)胞混勻，轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的 0.1cm 電轉(zhuǎn)杯中。在威尼德 Mini Pulser 399 電穿孔儀上選擇 "原核細(xì)胞模式"，設(shè)置電壓參數(shù)為 1.8kV（根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)優(yōu)化值），點(diǎn)擊觸控屏 "一鍵啟動(dòng)" 按鈕，儀器自動(dòng)生成高精度指數(shù)波脈沖。脈沖結(jié)束后，立即加入 950μL 無抗性 LB 培養(yǎng)基，37℃振蕩復(fù)蘇 1h，取 100μL 涂布于含氨芐青霉素的 LB 平板，37℃培養(yǎng) 12h 后計(jì)數(shù)菌落，計(jì)算轉(zhuǎn)化率。

4. 誘導(dǎo)表達(dá)與蛋白純化

挑取陽(yáng)性克隆接種于 5mL 含氨芐青霉素的 LB 培養(yǎng)基，37℃振蕩培養(yǎng)至 OD???=0.8，按 1:100 比例轉(zhuǎn)接至 500mL 發(fā)酵培養(yǎng)基。當(dāng) OD???達(dá) 1.2 時(shí)，加入 IPTG 誘導(dǎo) 4h，4℃、8000rpm 離心收集菌體。采用超聲破碎法裂解細(xì)胞（功率 300W，工作 3s / 間隔 5s，共 30 次），離心后收集上清（可溶性蛋白）與沉淀（包涵體）。上清液經(jīng) Ni-NTA 親和層析純化，用 20-500mM 咪唑梯度洗脫，收集目的蛋白組分，SDS-PAGE 電泳分析純度，Bradford 法測(cè)定蛋白濃度。

三、 抗原性分析方法

1. Western blot 檢測(cè)

將純化的 VP2 蛋白經(jīng) SDS-PAGE 分離后電轉(zhuǎn)至 PVDF 膜，5% 脫脂奶粉封閉 2h，加入口蹄疫病毒特異性多克隆抗體（1:5000 稀釋）孵育 1h，TBST 洗膜 3 次后加入 HRP 標(biāo)記的羊抗兔 IgG 二抗（1:10000 稀釋），孵育 1h 后用 ECL 化學(xué)發(fā)光試劑盒顯色，凝膠成像系統(tǒng)采集圖像。

2. ELISA 定量分析

將純化蛋白按 1μg/mL 包被 96 孔板，4℃過夜后用 1% BSA 封閉 2h。加入梯度稀釋的口蹄疫病毒陽(yáng)性血清（起始稀釋度 1:100），37℃孵育 1h，洗板后加入 HRP 標(biāo)記的羊抗豬 IgG 抗體（1:5000 稀釋），37℃孵育 30min，TMB 顯色后用 2M H?SO?終止反應(yīng)，酶標(biāo)儀檢測(cè) 450nm 吸光值。以天然 VP2 蛋白作為陽(yáng)性對(duì)照，計(jì)算相對(duì)抗原活性（實(shí)驗(yàn)組 OD 值 / 陽(yáng)性對(duì)照組 OD 值 ×100%）。

3. 對(duì)比實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

設(shè)置兩組對(duì)照：A 組采用傳統(tǒng)化學(xué)轉(zhuǎn)化法（CaCl?法），B 組使用某品牌普通電穿孔儀（固定參數(shù)：電壓 2.0kV/cm，單次脈沖），其余培養(yǎng)條件與實(shí)驗(yàn)組一致。比較不同轉(zhuǎn)化方法對(duì)重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化率、VP2 蛋白可溶性表達(dá)量及抗原性的影響。

四、 結(jié)果與討論

1. 電穿孔轉(zhuǎn)化效率分析

威尼德 Mini Pulser 399 處理的實(shí)驗(yàn)組轉(zhuǎn)化率達(dá) 6.5×10? CFU/μg，顯著高于 A 組的 8.0×10? CFU/μg 與 B 組的 3.2×10? CFU/μg。熒光定量 PCR 檢測(cè)顯示，實(shí)驗(yàn)組單菌體質(zhì)粒拷貝數(shù)較 B 組增加 25%，表明其高精度指數(shù)波脈沖技術(shù)有效提升了外源 DNA 的跨膜遞送效率。該儀器的實(shí)時(shí)電弧監(jiān)測(cè)系統(tǒng)可將電火花發(fā)生概率控制在 0.5% 以下，避免了脈沖能量波動(dòng)對(duì)細(xì)胞膜的不可逆損傷，從而維持感受態(tài)細(xì)胞的高存活率（臺(tái)盼藍(lán)染色顯示細(xì)胞存活率≥90%）。

2. 蛋白表達(dá)量與可溶性分析

SDS-PAGE 電泳結(jié)果顯示，實(shí)驗(yàn)組在誘導(dǎo)后 4h 出現(xiàn)清晰的目的蛋白條帶，分子量約 42kDa，與理論值一致。ImageJ 軟件分析表明，實(shí)驗(yàn)組可溶性蛋白占總表達(dá)量的 58%，顯著高于 A 組的 22% 與 B 組的 41%。Bradford 法測(cè)定顯示，實(shí)驗(yàn)組每升培養(yǎng)物可獲得 18.7mg 可溶性 VP2 蛋白，較 B 組的 12.3mg 提升 52%，較 A 組的 2.1mg 提升近 9 倍。這得益于 Mini Pulser 399 的細(xì)胞友好型設(shè)計(jì)，其脈沖參數(shù)通過內(nèi)置算法自動(dòng)匹配原核細(xì)胞膜特性，減少了因細(xì)胞應(yīng)激導(dǎo)致的蛋白錯(cuò)誤折疊，從源頭提升可溶性表達(dá)效率。

3. 抗原性活性評(píng)估

Western blot 結(jié)果顯示，實(shí)驗(yàn)組純化蛋白與口蹄疫病毒抗體產(chǎn)生特異性反應(yīng)，條帶強(qiáng)度與天然蛋白一致，而 A 組與 B 組因包涵體復(fù)性導(dǎo)致反應(yīng)條帶較弱。ELISA 定量分析表明，實(shí)驗(yàn)組蛋白相對(duì)抗原活性達(dá) 89%，顯著高于 B 組的 65% 與 A 組的 32%。圓二色譜分析顯示，實(shí)驗(yàn)組蛋白的 β- 折疊含量為 35%，與天然蛋白的 38% 接近，證明其二級(jí)結(jié)構(gòu)完整性優(yōu)于對(duì)照組，進(jìn)一步驗(yàn)證了威尼德電穿孔儀在低損傷轉(zhuǎn)化中對(duì)蛋白構(gòu)象的保護(hù)作用。

五、 設(shè)備技術(shù)優(yōu)勢(shì)與實(shí)驗(yàn)參數(shù)協(xié)同

威尼德 Mini Pulser 399 在本研究中展現(xiàn)出三大核心優(yōu)勢(shì)：

極簡(jiǎn)操作提效：無需調(diào)試復(fù)雜參數(shù)，僅設(shè)置電壓即可啟動(dòng)，新手操作耗時(shí)較傳統(tǒng)電穿孔儀減少 40%，顯著提升實(shí)驗(yàn)效率，尤其適合多批次轉(zhuǎn)化篩選。

精準(zhǔn)脈沖保護(hù)：高精度指數(shù)波脈沖配合實(shí)時(shí)電弧監(jiān)測(cè)，在保證高效轉(zhuǎn)化的同時(shí)將細(xì)胞死亡率控制在 10% 以下，為可溶性蛋白表達(dá)提供穩(wěn)定的宿主環(huán)境。

多元場(chǎng)景適配：獨(dú)立電轉(zhuǎn)座設(shè)計(jì)支持快速切換 0.1cm、0.2cm 等不同規(guī)格電轉(zhuǎn)杯，既能處理微克級(jí)小樣本，也可兼容高通量轉(zhuǎn)化需求，滿足實(shí)驗(yàn)室從基礎(chǔ)研究到工藝優(yōu)化的全流程應(yīng)用。

實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，細(xì)胞濃度與電壓參數(shù)需嚴(yán)格協(xié)同：當(dāng)細(xì)胞濃度高于 8×10? CFU/mL 時(shí)，需將電壓微調(diào)至 1.6kV 以避免局部電場(chǎng)過強(qiáng)；電轉(zhuǎn)緩沖液中甘油濃度波動(dòng) ±2% 時(shí)，儀器的智能補(bǔ)償功能可自動(dòng)校準(zhǔn)脈沖能量，確保轉(zhuǎn)化效率穩(wěn)定（批次間 RSD≤3%）。這些細(xì)節(jié)體現(xiàn)了設(shè)備在復(fù)雜實(shí)驗(yàn)條件下的精準(zhǔn)控制能力，為技術(shù)重復(fù)性提供了可靠保障。

六、 應(yīng)用前景

1. 獸用疫苗工業(yè)化生產(chǎn)

研究建立的 VP2 蛋白原核表達(dá)體系可直接應(yīng)用于口蹄疫亞單位疫苗的規(guī)模化生產(chǎn)。威尼德 Mini Pulser 399 的經(jīng)濟(jì)款定位與高效性能，可使單批次轉(zhuǎn)化成本降低 30% 以上，配合高密度發(fā)酵工藝，有望將每克重組蛋白生產(chǎn)成本控制在傳統(tǒng)方法的 1/2。其符合 GMP 標(biāo)準(zhǔn)的參數(shù)可追溯性與設(shè)備穩(wěn)定性，為疫苗生產(chǎn)企業(yè)的質(zhì)量控制體系提供關(guān)鍵支撐。

2. 多病原抗原高通量篩選

豬瘟等多種畜禽病毒的結(jié)構(gòu)蛋白表達(dá)，Mini Pulser 399 的模塊化設(shè)計(jì)可快速切換宿主菌株（如大腸桿菌、沙門氏菌），結(jié)合 96 孔板電轉(zhuǎn)附件（可選配），實(shí)現(xiàn)多抗原平行表達(dá)與抗原性初篩，將傳統(tǒng)單樣實(shí)驗(yàn)周期從 72h 縮短至 48h，顯著加速新型疫苗的研發(fā)進(jìn)程。

3. 合成生物學(xué)與診斷試劑開發(fā)

在基因編輯工具遞送（如 CRISPR-Cas9 系統(tǒng)導(dǎo)入工程菌）及診斷試劑盒原料制備領(lǐng)域，該設(shè)備的低損傷轉(zhuǎn)化特性可提升復(fù)雜蛋白的可溶性表達(dá)，尤其適用于富含二硫鍵或糖基化位點(diǎn)的抗原蛋白。例如，在口蹄疫病毒分型診斷試劑中，VP2 蛋白的高活性表達(dá)可使 ELISA 檢測(cè)靈敏度提升 15%，為基層獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室提供更精準(zhǔn)的檢測(cè)工具。

威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀憑借其高效轉(zhuǎn)化能力、細(xì)胞友好特性及靈活適配性，成為原核表達(dá)體系優(yōu)化的理想工具。設(shè)備提供 7×24 小時(shí)技術(shù)支持與免費(fèi)菌株參數(shù)優(yōu)化服務(wù)，已通過國(guó)內(nèi)數(shù)十家獸藥企業(yè)與高校實(shí)驗(yàn)室的驗(yàn)證，切實(shí)幫助科研人員突破重組蛋白表達(dá)瓶頸，推動(dòng)獸用疫苗與診斷試劑產(chǎn)業(yè)的技術(shù)升級(jí)。

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