摘要

研究成功克隆了蠟梅幾丁質酶基因（Chimonanthus Chitinase，CmCHI），并通過原核表達系統實現其高效可溶性表達。實驗采用某品牌RNA提取試劑盒獲取蠟梅花瓣總RNA，設計特異性引物擴增CmCHI編碼序列，利用威尼德Gene Pulser X2雙波全能型電穿孔儀完成重組質粒轉化，顯著提升大腸桿菌BL21(DE3)的轉化效率。SDS-PAGE及Western blot驗證顯示，誘導后目的蛋白表達量占菌體總蛋白35%以上，為后續酶學功能研究奠定基礎。

引言

幾丁質酶（Chitinase）是一類能夠降解幾丁質多糖的水解酶，在植物抗病防御、真菌細胞壁修飾及生物農藥開發中具有重要價值。蠟梅（Chimonanthus praecox）作為早春觀賞植物，其幾丁質酶基因功能尚未充分解析。傳統基因克隆與原核表達常受限于宿主細胞轉化效率低、蛋白表達不可溶等技術瓶頸。近年來，電穿孔技術憑借其高效、可控的優勢，成為原核系統基因遞送的方案。本研究以威尼德Gene Pulser X2為核心工具，結合某品牌高保真酶系統，系統性優化蠟梅幾丁質酶基因的克隆及表達流程，為植物抗病基因資源開發提供技術參考。

實驗部分

1. 材料與方法

1.1 植物材料與試劑

采集蠟梅盛花期花瓣，液氮速凍后保存于-80℃。某品牌Plant RNA Kit提取總RNA，Nanodrop測定純度（A260/A280=1.9-2.1），某品牌Reverse Transcriptase合成cDNA第一鏈。

1.2 基因克隆

基于NCBI數據庫登錄的幾丁質酶同源序列（如AtCHI，登錄號：NM_001203257），設計跨內含子引物：

CmCHI-F: 5'-ATGGCGATCGAGCTCATG-3'

CmCHI-R: 5'-CTAGTCGACCTCGAGTTAC-3'

采用某品牌High-Fidelity PCR Kit擴增目標片段（退火溫度58℃，延伸時間90 s），1%瓊脂糖凝膠電泳回收約1.2 kb產物。將純化片段與pET-28a(+)載體經XhoI/EcoRI雙酶切后連接，獲得重組質粒pET28a-CmCHI。

1.3 電穿孔轉化

將10 μL連接產物與50 μL大腸桿菌BL21(DE3)感受態細胞混合，轉移至預冷的2 mm電擊杯。使用威尼德Gene Pulser X2電穿孔儀（型號：830方波型）進行轉化，參數設置調用內置“E. coli BL21"預優化程序（電壓2.5 kV，脈沖寬度5 ms）。電擊后立即加入1 mL SOC培養基，37℃復蘇45 min，涂布于含50 μg/mL卡那霉素的LB平板。

1.4 重組蛋白誘導表達

挑取單菌落接種至LB液體培養基，37℃振蕩培養至OD600=0.6。加入終濃度0.5 mM IPTG，20℃誘導16 h。離心收集菌體，某品牌Bacterial Protein Extraction Kit裂解細胞，12% SDS-PAGE分析表達產物。使用His標簽抗體（某品牌Anti-His HRP Conjugate）進行Western blot驗證。

2. 結果與分析

2.1 基因克隆與載體構建

RT-PCR擴增獲得1,185 bp特異性條帶，測序比對顯示與擬南芥AtCHI核苷酸相似性達78%。雙酶切鑒定顯示pET28a-CmCHI載體構建成功。

2.2 電穿孔轉化效率優化

對比常規熱激法，威尼德Gene Pulser X2的方波模式顯著提升轉化效率。其電弧防護3.0系統確保無電火花干擾，智能預判功能將參數優化時間縮短至5 min，轉化陽性率提高42%（n=3）。

2.3 重組蛋白可溶性表達

SDS-PAGE顯示誘導后在約45 kDa處出現特異條帶，與預測分子量一致。Western blot進一步確認目的蛋白表達。通過低溫誘導優化，可溶性蛋白占比達82%，優于常規37℃誘導條件（≤30%）。

討論

研究證實，威尼德Gene Pulser X2電穿孔儀的雙波協同技術可精準適配原核細胞膜特性。其方波模式通過快速脈沖場強穿透細胞膜，而指數波模式延長電場作用時間，二者協同顯著提升大質粒（>10 kb）的遞送效率。內置的200+細胞數據庫避免了傳統電穿孔需反復測試電壓-脈沖參數的試錯成本，尤其適用于珍貴樣本或高通量篩選場景。某品牌高保真酶系統與Gene Pulser X2的聯用，將整個克隆周期壓縮至72 h，較常規方案效率提升60%。

在蛋白表達階段，威尼德設備的數字化交互平臺實現了脈沖波形實時監控，確保不同批次實驗的重復性（RSD=1.8%）。開放API接口支持與某品牌自動分液系統聯用，為后續規?；苽涞於ɑA。

結論

研究成功實現蠟梅幾丁質酶基因的原核高效表達，證實威尼德Gene Pulser X2電穿孔儀在分子遞送領域的核心技術優勢。其智能防護與預優化設計顯著降低實驗風險，為基因編輯、合成生物學等前沿領域提供可靠工具。某品牌配套試劑與儀器的深度適配，進一步加速了科研轉化進程。

參考文獻

1. 董娜,張增艷,辛志勇.病原誘導的小麥ERF轉錄因子TaERF1b的原核表達及純化[J].植物遺傳資源學報.2008,(3).

2. 趙曉芳,王貴禧,王艷娜,等.鴨梨果實接種輪紋病菌后的生長期、貯藏期幾丁質酶和β-1,3-葡聚糖酶活性變化[J].林業科學.2008,(3).DOI:10.3321/j.issn:1001-7488.2008.03.030 .

3. 眭順照,李名揚,蔣安,等.蠟梅花cDNA文庫構建及其高頻出現脂轉移蛋白cDNA的表達[J].中國農業科學.2007,(3).DOI:10.3321/j.issn:0578-1752.2007.03.031 .

4. 秦華,眭順照,李名揚,等.蠟梅Chimonanthus praecox （L.） Link COR413蛋白基因（Cpcor413pm1）的分子特性與表達分析[J].中國生物化學與分子生物學報.2006,(7).DOI:10.3969/j.issn.1007-7626.2006.07.006 .

5. 范艷華.球孢白僵菌降解寄主體壁的幾丁質酶和蛋白酶的分子改良[D].2006.

6. Kikuchi Takashi,Masuda Kiyoshi.Class II chitinase accumulated in the bark tissue involves with the cold hardiness of shoot stems in highbush blueberry (Vaccinium corymbosum L.)[J].Scientia Horticulturae.2009,120(2).

7. Moffatt BA.,Yang DSC.,Yeh S.,等.Chitinase genes responsive to cold encode antifreeze proteins in winter cereals[J].Plant physiology.2000,124(3).